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UNIVERSITE MOHAMMED V DE RABAT FACULTE DE MEDECINE ET DE PHARMACIE – RABAT
DOYENS HONORAIRES :
1962 – 1969 : Professeur Abdelmalek FARAJ 1969 – 1974 : Professeur Abdellatif BERBICH
1974 – 1981 : Professeur Bachir LAZRAK 1981 – 1989 : Professeur Taieb CHKILI
1989 – 1997 : Professeur Mohamed Tahar ALAOUI 1997 – 2003 : Professeur Abdelmajid BELMAHI
2003 – 2013 : Professeur Najia HAJJAJ - HASSOUNI
ADMINISTRATION :
Doyen : Professeur Mohamed ADNAOUI
Vice Doyen chargé des Affaires Académiques et estudiantines
Professeur Mohammed AHALLAT
Vice Doyen chargé de la Recherche et de la Coopération
Professeur Taoufiq DAKKA
Vice Doyen chargé des Affaires Spécifiques à la Pharmacie
Professeur Jamal TAOUFIK
Secrétaire Général : Mr. El Hassane AHALLAT
1- ENSEIGNANTS-CHERCHEURS MEDECINS ET
PHARMACIENS
PROFESSEURS :
Mai et Octobre 1981
Pr. MAAZOUZI Ahmed Wajih Chirurgie Cardio-Vasculaire
Pr. TAOBANE Hamid* Chirurgie Thoracique
Mai et Novembre 1982
Pr. BENOSMAN Abdellatif Chirurgie Thoracique
Novembre 1983
Pr. HAJJAJ Najia ép. HASSOUNI Rhumatologie
Décembre 1984
Pr. MAAOUNI Abdelaziz Médecine Interne – Clinique Royale Pr. MAAZOUZI Ahmed Wajdi Anesthésie -Réanimation
Pr. SETTAF Abdellatif Pathologie Chirurgicale
Novembre et Décembre 1985
Pr. BENJELLOUN Halima Cardiologie
Pr. BENSAID Younes Pathologie Chirurgicale Pr. EL ALAOUI Faris Moulay El Mostafa Neurologie
Janvier, Février et Décembre 1987
Pr. AJANA Ali Radiologie
Pr. CHAHED OUAZZANI Houria Gastro-Entérologie Pr. EL YAACOUBI Moradh Traumatologie Orthopédie Pr. ESSAID EL FEYDI Abdellah Gastro-Entérologie
Pr. LACHKAR Hassan Médecine Interne
Pr. YAHYAOUI Mohamed Neurologie
Décembre 1988
Pr. BENHAMAMOUCH Mohamed Najib Chirurgie Pédiatrique
Pr. DAFIRI Rachida Radiologie
Pr. HERMAS Mohamed Traumatologie Orthopédie
Décembre 1989
Pr. ADNAOUI Mohamed Médecine Interne –Doyen de la FMPR Pr. BOUKILI MAKHOUKHI Abdelali* Cardiologie
Pr. CHAD Bouziane Pathologie Chirurgicale Pr. OUAZZANI Taïbi Mohamed Réda Neurologie
Janvier et Novembre 1990
Pr. CHKOFF Rachid Pathologie Chirurgicale Pr. HACHIM Mohammed* Médecine-Interne
Pr. KHARBACH Aîcha Gynécologie -Obstétrique Pr. MANSOURI Fatima Anatomie-Pathologique Pr. TAZI Saoud Anas Anesthésie Réanimation
Février Avril Juillet et Décembre 1991
Pr. AL HAMANY Zaîtounia Anatomie-Pathologique
Pr. AZZOUZI Abderrahim Anesthésie Réanimation –Doyen de la FMPO
Pr. BAYAHIA Rabéa Néphrologie
Pr. BELKOUCHI Abdelkader Chirurgie Générale Pr. BENCHEKROUN Belabbes Abdellatif Chirurgie Générale Pr. BENSOUDA Yahia Pharmacie galénique
Pr. BERRAHO Amina Ophtalmologie
Pr. BEZZAD Rachid Gynécologie Obstétrique Pr. CHABRAOUI Layachi Biochimie et Chimie
Pr. CHERRAH Yahia Pharmacologie
Pr. CHOKAIRI Omar Histologie Embryologie
Pr. KHATTAB Mohamed Pédiatrie
Pr. SOULAYMANI Rachida Pharmacologie – Dir. du Centre National PV Pr. TAOUFIK Jamal Chimie thérapeutique
Décembre 1992
Pr. AHALLAT Mohamed Chirurgie Générale
Pr. BENSOUDA Adil Anesthésie Réanimation
Pr. BOUJIDA Mohamed Najib Radiologie
Pr. CHAHED OUAZZANI Laaziza Gastro-Entérologie Pr. CHRAIBI Chafiq Gynécologie Obstétrique
Pr. DAOUDI Rajae Ophtalmologie
Pr. DEHAYNI Mohamed* Gynécologie Obstétrique Pr. EL OUAHABI Abdessamad Neurochirurgie
Pr. FELLAT Rokaya Cardiologie Pr. GHAFIR Driss* Médecine Interne
Pr. JIDDANE Mohamed Anatomie
Pr. TAGHY Ahmed Chirurgie Générale
Pr. ZOUHDI Mimoun Microbiologie
Mars 1994
Pr. BENJAAFAR Noureddine Radiothérapie
Pr. BEN RAIS Nozha Biophysique
Pr. CAOUI Malika Biophysique
Pr. CHRAIBI Abdelmjid Endocrinologie et Maladies Métaboliques Pr. EL AMRANI Sabah Gynécologie Obstétrique
Pr. EL AOUAD Rajae Immunologie
Pr. EL BARDOUNI Ahmed Traumato-Orthopédie Pr. EL HASSANI My Rachid Radiologie
Pr. ERROUGANI Abdelkader Chirurgie Générale- Directeur CHIS
Pr. ESSAKALI Malika Immunologie
Pr. ETTAYEBI Fouad Chirurgie Pédiatrique
Pr. HADRI Larbi* Médecine Interne
Pr. HASSAM Badredine Dermatologie
Pr. IFRINE Lahssan Chirurgie Générale
Pr. JELTHI Ahmed Anatomie Pathologique
Pr. MAHFOUD Mustapha Traumatologie – Orthopédie
Pr. MOUDENE Ahmed* Traumatologie- Orthopédie Inspecteur du SS Pr. RHRAB Brahim Gynécologie –Obstétrique
Pr. SENOUCI Karima Dermatologie
Mars 1994
Pr. ABBAR Mohamed* Urologie
Pr. ABDELHAK M’barek Chirurgie – Pédiatrique
Pr. BELAIDI Halima Neurologie
Pr. BRAHMI Rida Slimane Gynécologie Obstétrique Pr. BENTAHILA Abdelali Pédiatrie
Pr. BENYAHIA Mohammed Ali Gynécologie – Obstétrique Pr. BERRADA Mohamed Saleh Traumatologie – Orthopédie
Pr. CHAMI Ilham Radiologie
Pr. CHERKAOUI Lalla Ouafae Ophtalmologie
Pr. EL ABBADI Najia Neurochirurgie
Pr. HANINE Ahmed* Radiologie
Pr. JALIL Abdelouahed Chirurgie Générale
Pr. LAKHDAR Amina Gynécologie Obstétrique
Pr. MOUANE Nezha Pédiatrie
Mars 1995
Pr. ABOUQUAL Redouane Réanimation Médicale
Pr. AMRAOUI Mohamed Chirurgie Générale
Pr. BAIDADA Abdelaziz Gynécologie Obstétrique
Pr. BARGACH Samir Gynécologie Obstétrique
Pr. CHAARI Jilali* Médecine Interne
Pr. DIMOU M’barek* Anesthésie Réanimation – Dir. HMIM Pr. DRISSI KAMILI Med Nordine* Anesthésie Réanimation
Pr. ESSAKALI HOUSSYNI Leila Oto-Rhino-Laryngologie
Pr. HDA Abdelhamid* Cardiologie - Directeur ERSM Pr. IBEN ATTYA ANDALOUSSI Ahmed Urologie
Pr. OUAZZANI CHAHDI Bahia Ophtalmologie
Pr. SEFIANI Abdelaziz Génétique
Pr. ZEGGWAGH Amine Ali Réanimation Médicale
Décembre 1996
Pr. AMIL Touriya* Radiologie
Pr. BELKACEM Rachid Chirurgie Pédiatrie Pr. BOULANOUAR Abdelkrim Ophtalmologie Pr. EL ALAMI EL FARICHA EL Hassan Chirurgie Générale
Pr. GAOUZI Ahmed Pédiatrie
Pr. MAHFOUDI M’barek* Radiologie Pr. MOHAMMADI Mohamed Médecine Interne
Pr. OUADGHIRI Mohamed Traumatologie-Orthopédie
Pr. OUZEDDOUN Naima Néphrologie
Pr. ZBIR EL Mehdi* Cardiologie
Novembre 1997
Pr. ALAMI Mohamed Hassan Gynécologie-Obstétrique Pr. BEN SLIMANE Lounis Urologie
Pr. BIROUK Nazha Neurologie
Pr. CHAOUIR Souad* Radiologie
Pr. ERREIMI Naima Pédiatrie
Pr. FELLAT Nadia Cardiologie
Pr. HAIMEUR Charki* Anesthésie Réanimation Pr. KADDOURI Noureddine Chirurgie Pédiatrique
Pr. KOUTANI Abdellatif Urologie
Pr. LAHLOU Mohamed Khalid Chirurgie Générale
Pr. MAHRAOUI CHAFIQ Pédiatrie
Pr. OUAHABI Hamid* Neurologie
Pr. TAOUFIQ Jallal Psychiatrie
Pr. YOUSFI MALKI Mounia Gynécologie Obstétrique
Novembre 1998
Pr. AFIFI RAJAA Gastro-Entérologie
Pr. BENOMAR ALI Neurologie – Doyen Abulcassis Pr. BOUGTAB Abdesslam Chirurgie Générale
Pr. ER RIHANI Hassan Oncologie Médicale Pr. EZZAITOUNI Fatima Néphrologie
Pr. LAZRAK Khalid * Traumatologie Orthopédie
Pr. BENKIRANE Majid* Hématologie
Pr. KHATOURI ALI* Cardiologie
Pr. LABRAIMI Ahmed* Anatomie Pathologique
Janvier 2000
Pr. ABID Ahmed* Pneumophtisiologie
Pr. AIT OUMAR Hassan Pédiatrie
Pr. BENJELLOUN Dakhama Badr.Sououd Pédiatrie
Pr. BOURKADI Jamal-Eddine Pneumo-phtisiologie Pr. CHARIF CHEFCHAOUNI Al Montacer Chirurgie Générale Pr. ECHARRAB El Mahjoub Chirurgie Générale Pr. EL FTOUH Mustapha Pneumo-phtisiologie Pr. EL MOSTARCHID Brahim* Neurochirurgie
Pr. ISMAILI Hassane* Traumatologie Orthopédie Pr. MAHMOUDI Abdelkrim* Anesthésie-Réanimation Pr. TACHINANTE Rajae Anesthésie-Réanimation Pr. TAZI MEZALEK Zoubida Médecine Interne
Novembre 2000
Pr. AIDI Saadia Neurologie
Pr. AIT OURHROUI Mohamed Dermatologie Pr. AJANA Fatima Zohra Gastro-Entérologie
Pr. BENAMR Said Chirurgie Générale
Pr. CHERTI Mohammed Cardiologie
Pr. ECH-CHERIF EL KETTANI Selma Anesthésie-Réanimation
Pr. EL HASSANI Amine Pédiatrie
Pr. EL KHADER Khalid Urologie
Pr. EL MAGHRAOUI Abdellah* Rhumatologie
Pr. GHARBI Mohamed El Hassan Endocrinologie et Maladies Métaboliques Pr. HSSAIDA Rachid* Anesthésie-Réanimation
Pr. LAHLOU Abdou Traumatologie Orthopédie
Pr. MAFTAH Mohamed* Neurochirurgie
Pr. MAHASSINI Najat Anatomie Pathologique Pr. MDAGHRI ALAOUI Asmae Pédiatrie
Pr. NASSIH Mohamed* Stomatologie Et Chirurgie Maxillo-Faciale
Pr. ROUIMI Abdelhadi* Neurologie
Décembre 2000
Pr. ZOHAIR ABDELAH* ORL
Décembre 2001
Pr. ABABOU Adil Anesthésie-Réanimation
Pr. BALKHI Hicham* Anesthésie-Réanimation
Pr. BENABDELJLIL Maria Neurologie
Pr. BENAMAR Loubna Néphrologie
Pr. BENAMOR Jouda Pneumo-phtisiologie
Pr. BENELBARHDADI Imane Gastro-Entérologie
Pr. BENNANI Rajae Cardiologie
Pr. BENOUACHANE Thami Pédiatrie
Pr. BEZZA Ahmed* Rhumatologie
Pr. BOUCHIKHI IDRISSI Med Larbi Anatomie Pr. BOUMDIN El Hassane* Radiologie
Pr. CHAT Latifa Radiologie
Pr. DRISSI Sidi Mourad* Radiologie
Pr. EL HIJRI Ahmed Anesthésie-Réanimation Pr. EL MAAQILI Moulay Rachid Neuro-Chirurgie
Pr. EL MADHI Tarik Chirurgie-Pédiatrique Pr. EL OUNANI Mohamed Chirurgie Générale
Pr. ETTAIR Said Pédiatrie
Pr. GAZZAZ Miloudi* Neuro-Chirurgie
Pr. HRORA Abdelmalek Chirurgie Générale
Pr. KABBAJ Saad Anesthésie-Réanimation
Pr. KABIRI EL Hassane* Chirurgie Thoracique Pr. LAMRANI Moulay Omar Traumatologie Orthopédie
Pr. LEKEHAL Brahim Chirurgie Vasculaire Périphérique Pr. MAHASSIN Fattouma* Médecine Interne
Pr. MEDARHRI Jalil Chirurgie Générale
Pr. MIKDAME Mohammed* Hématologie Clinique
Pr. MOHSINE Raouf Chirurgie Générale
Pr. NOUINI Yassine Urologie
Pr. SABBAH Farid Chirurgie Générale
Pr. SEFIANI Yasser Chirurgie Vasculaire Périphérique Pr. TAOUFIQ BENCHEKROUN Soumia Pédiatrie
Décembre 2002
Pr. AL BOUZIDI Abderrahmane* Anatomie Pathologique
Pr. AMEUR Ahmed * Urologie
Pr. AMRI Rachida Cardiologie
Pr. AOURARH Aziz* Gastro-Entérologie
Pr. BAMOU Youssef * Biochimie-Chimie
Pr. BELMEJDOUB Ghizlene* Endocrinologie et Maladies Métaboliques
Pr. BENZEKRI Laila Dermatologie
Pr. BENZZOUBEIR Nadia Gastro-Entérologie Pr. BERNOUSSI Zakiya Anatomie Pathologique Pr. BICHRA Mohamed Zakariya* Psychiatrie
Pr. CHOHO Abdelkrim * Chirurgie Générale
Pr. CHKIRATE Bouchra Pédiatrie
Pr. EL ALAMI EL FELLOUS Sidi Zouhair Chirurgie Pédiatrique Pr. EL HAOURI Mohamed * Dermatologie
Pr. EL MANSARI Omar* Chirurgie Générale Pr. FILALI ADIB Abdelhai Gynécologie Obstétrique
Pr. HAJJI Zakia Ophtalmologie
Pr. IKEN Ali Urologie
Pr. JAAFAR Abdeloihab* Traumatologie Orthopédie
Pr. KRIOUILE Yamina Pédiatrie
Pr. LAGHMARI Mina Ophtalmologie
Pr. MABROUK Hfid* Traumatologie Orthopédie
Pr. MOUSSAOUI RAHALI Driss* Gynécologie Obstétrique Pr. MOUSTAGHFIR Abdelhamid* Cardiologie
Pr. NAITLHO Abdelhamid* Médecine Interne
Pr. OUJILAL Abdelilah Oto-Rhino-Laryngologie Pr. RACHID Khalid * Traumatologie Orthopédie
Pr. RAISS Mohamed Chirurgie Générale Pr. RGUIBI IDRISSI Sidi Mustapha* Pneumophtisiologie
Pr. RHOU Hakima Néphrologie
Pr. SIAH Samir * Anesthésie Réanimation
Pr. THIMOU Amal Pédiatrie
Pr. ZENTAR Aziz* Chirurgie Générale
Janvier 2004
Pr. ABDELLAH El Hassan Ophtalmologie
Pr. AMRANI Mariam Anatomie Pathologique Pr. BENBOUZID Mohammed Anas Oto-Rhino-Laryngologie Pr. BENKIRANE Ahmed* Gastro-Entérologie Pr. BOUGHALEM Mohamed* Anesthésie Réanimation
Pr. BOULAADAS Malik Stomatologie et Chirurgie Maxillo-faciale Pr. BOURAZZA Ahmed* Neurologie
Pr. CHAGAR Belkacem* Traumatologie Orthopédie Pr. CHERRADI Nadia Anatomie Pathologique
Pr. EL FENNI Jamal* Radiologie
Pr. EL HANCHI ZAKI Gynécologie Obstétrique Pr. EL KHORASSANI Mohamed Pédiatrie
Pr. EL YOUNASSI Badreddine* Cardiologie
Pr. HACHI Hafid Chirurgie Générale
Pr. JABOUIRIK Fatima Pédiatrie
Pr. KHABOUZE Samira Gynécologie Obstétrique Pr. KHARMAZ Mohamed Traumatologie Orthopédie
Pr. LEZREK Mohammed* Urologie
Pr. MOUGHIL Said Chirurgie Cardio-Vasculaire Pr. OUBAAZ Abdelbarre* Ophtalmologie
Pr. TARIB Abdelilah* Pharmacie Clinique Pr. TIJAMI Fouad Chirurgie Générale
Pr. ZARZUR Jamila Cardiologie
Janvier 2005
Pr. ABBASSI Abdellah Chirurgie Réparatrice et Plastique Pr. AL KANDRY Sif Eddine* Chirurgie Générale
Pr. ALAOUI Ahmed Essaid Microbiologie
Pr. ALLALI Fadoua Rhumatologie
Pr. AMAZOUZI Abdellah Ophtalmologie
Pr. AZIZ Noureddine* Radiologie
Pr. BAHIRI Rachid Rhumatologie
Pr. BARKAT Amina Pédiatrie
Pr. BENHALIMA Hanane Stomatologie et Chirurgie Maxillo Faciale
Pr. BENYASS Aatif Cardiologie
Pr. BERNOUSSI Abdelghani Ophtalmologie Pr. CHARIF CHEFCHAOUNI Mohamed Ophtalmologie Pr. DOUDOUH Abderrahim* Biophysique Pr. EL HAMZAOUI Sakina* Microbiologie
Pr. HAJJI Leila Cardiologie (mise en disponibilité)
Pr. HESSISSEN Leila Pédiatrie
Pr. JIDAL Mohamed* Radiologie
Pr. LYAGOUBI Mohammed Parasitologie Pr. NIAMANE Radouane* Rhumatologie
Pr. RAGALA Abdelhak Gynécologie Obstétrique
Pr. SBIHI Souad Histo-Embryologie Cytogénétique Pr. ZERAIDI Najia Gynécologie Obstétrique
Décembre 2005
Pr. CHANI Mohamed Anesthésie Réanimation
Avril 2006
Pr. ACHEMLAL Lahsen* Rhumatologie
Pr. AKJOUJ Said* Radiologie
Pr. BELMEKKI Abdelkader* Hématologie
Pr. BENCHEIKH Razika O.R.L
Pr. BIYI Abdelhamid* Biophysique
Pr. BOUHAFS Mohamed El Amine Chirurgie - Pédiatrique Pr. BOULAHYA Abdellatif* Chirurgie Cardio – Vasculaire Pr. CHENGUETI ANSARI Anas Gynécologie Obstétrique
Pr. DOGHMI Nawal Cardiologie
Pr. ESSAMRI Wafaa Gastro-entérologie
Pr. FELLAT Ibtissam Cardiologie
Pr. FAROUDY Mamoun Anesthésie Réanimation
Pr. GHADOUANE Mohammed* Urologie
Pr. HARMOUCHE Hicham Médecine Interne Pr. HANAFI Sidi Mohamed* Anesthésie Réanimation Pr. IDRISS LAHLOU Amine* Microbiologie
Pr. JROUNDI Laila Radiologie
Pr. KARMOUNI Tariq Urologie
Pr. KILI Amina Pédiatrie
Pr. KISRA Hassan Psychiatrie
Pr. KISRA Mounir Chirurgie – Pédiatrique
Pr. LAATIRIS Abdelkader* Pharmacie Galénique Pr. LMIMOUNI Badreddine* Parasitologie
Pr. MANSOURI Hamid* Radiothérapie
Pr. OUANASS Abderrazzak Psychiatrie
Pr. SAFI Soumaya* Endocrinologie
Pr. SEKKAT Fatima Zahra Psychiatrie
Pr. SOUALHI Mouna Pneumo – Phtisiologie
Pr. TELLAL Saida* Biochimie
Pr. ZAHRAOUI Rachida Pneumo – Phtisiologie
Octobre 2007
Pr. ABIDI Khalid Réanimation médicale
Pr. ACHACHI Leila Pneumo phtisiologie Pr. ACHOUR Abdessamad* Chirurgie générale
Pr. AIT HOUSSA Mahdi* Chirurgie cardio vasculaire Pr. AMHAJJI Larbi* Traumatologie orthopédie
Pr. AMMAR Haddou* ORL
Pr. AOUFI Sarra Parasitologie
Pr. BALOUCH Lhousaine* Biochimie-chimie
Pr. BENZIANE Hamid* Pharmacie clinique
Pr. BOUTIMZINE Nourdine Ophtalmologie Pr. CHARKAOUI Naoual* Pharmacie galénique Pr. EHIRCHIOU Abdelkader* Chirurgie générale Pr. ELABSI Mohamed Chirurgie générale Pr. EL MOUSSAOUI Rachid Anesthésie réanimation
Pr. EL OMARI Fatima Psychiatrie
Pr. GANA Rachid Neuro chirurgie
Pr. GHARIB Noureddine Chirurgie plastique et réparatrice
Pr. HADADI Khalid* Radiothérapie
Pr. ICHOU Mohamed* Oncologie médicale
Pr. ISMAILI Nadia Dermatologie
Pr. KEBDANI Tayeb Radiothérapie
Pr. LALAOUI SALIM Jaafar* Anesthésie réanimation
Pr. LOUZI Lhoussain* Microbiologie
Pr. MADANI Naoufel Réanimation médicale
Pr. MAHI Mohamed* Radiologie
Pr. MARC Karima Pneumo phtisiologie
Pr. MASRAR Azlarab Hématologique
Pr. MOUTAJ Redouane * Parasitologie
Pr. MRABET Mustapha* Médecine préventive santé publique et hygiène
Pr. MRANI Saad* Virologie
Pr. OUZZIF Ez zohra* Biochimie-chimie
Pr. RABHI Monsef* Médecine interne
Pr. RADOUANE Bouchaib* Radiologie
Pr. SEFFAR Myriame Microbiologie
Pr. SEKHSOKH Yessine* Microbiologie
Pr. SIFAT Hassan* Radiothérapie
Pr. TABERKANET Mustafa* Chirurgie vasculaire périphérique
Pr. TACHFOUTI Samira Ophtalmologie
Pr. TAJDINE Mohammed Tariq* Chirurgie générale
Pr. TANANE Mansour* Traumatologie orthopédie
Pr. TLIGUI Houssain Parasitologie
Pr. TOUATI Zakia Cardiologie
Décembre 2007
Pr. DOUHAL ABDERRAHMAN Ophtalmologie
Décembre 2008
Pr ZOUBIR Mohamed* Anesthésie Réanimation Pr TAHIRI My El Hassan* Chirurgie Générale
Mars 2009
Pr. ABOUZAHIR Ali* Médecine interne
Pr. AIT ALI Abdelmounaim* Chirurgie Générale Pr. AIT BENHADDOU El hachmia Neurologie
Pr. AKHADDAR Ali* Neuro-chirurgie
Pr. ALLALI Nazik Radiologie
Pr. AMAHZOUNE Brahim* Chirurgie Cardio-vasculaire
Pr. AMINE Bouchra Rhumatologie
Pr. ARKHA Yassir Neuro-chirurgie
Pr. AZENDOUR Hicham* Anesthésie Réanimation Pr. BELYAMANI Lahcen* Anesthésie Réanimation
Pr. BJIJOU Younes Anatomie
Pr. BOUHSAIN Sanae* Biochimie-chimie
Pr. BOUI Mohammed* Dermatologie
Pr. BOUNAIM Ahmed* Chirurgie Générale
Pr. BOUSSOUGA Mostapha* Traumatologie orthopédique Pr. CHAKOUR Mohammed * Hématologie biologique
Pr. CHTATA Hassan Toufik* Chirurgie vasculaire périphérique
Pr. DOGHMI Kamal* Hématologie clinique
Pr. EL MALKI Hadj Omar Chirurgie Générale Pr. EL OUENNASS Mostapha* Microbiologie Pr. ENNIBI Khalid* Médecine interne
Pr. FATHI Khalid Gynécologie obstétrique
Pr. HASSIKOU Hasna * Rhumatologie
Pr. KABBAJ Nawal Gastro-entérologie
Pr. KABIRI Meryem Pédiatrie
Pr. KARBOUBI Lamya Pédiatrie
Pr. L’KASSIMI Hachemi* Microbiologie
Pr. LAMSAOURI Jamal* Chimie Thérapeutique Pr. MARMADE Lahcen Chirurgie Cardio-vasculaire
Pr. MESKINI Toufik Pédiatrie
Pr. MESSAOUDI Nezha * Hématologie biologique
Pr. MSSROURI Rahal Chirurgie Générale
Pr. NASSAR Ittimade Radiologie
Pr. OUKERRAJ Latifa Cardiologie
Pr. RHORFI Ismail Abderrahmani * Pneumo-phtisiologie
Pr. ZOUHAIR Said* Microbiologie
PROFESSEURS AGREGES :
Octobre 2010
Pr. ALILOU Mustapha Anesthésie réanimation Pr. AMEZIANE Taoufiq* Médecine interne Pr. BELAGUID Abdelaziz Physiologie
Pr. BOUAITY Brahim* ORL
Pr. CHADLI Mariama* Microbiologie
Pr. CHEMSI Mohamed* Médecine aéronautique
Pr. DAMI Abdellah* Biochimie chimie
Pr. DARBI Abdellatif* Radiologie
Pr. DENDANE Mohammed Anouar Chirurgie pédiatrique
Pr. EL HAFIDI Naima Pédiatrie
Pr. EL MAZOUZ Samir Chirurgie plastique et réparatrice
Pr. EL SAYEGH Hachem Urologie
Pr. ERRABIH Ikram Gastro entérologie
Pr. LAMALMI Najat Anatomie pathologique
Pr. LEZREK Mounir Ophtalmologie
Pr. MALIH Mohamed* Pédiatrie
Pr. MOSADIK Ahlam Anesthésie Réanimation
Pr. MOUJAHID Mountassir* Chirurgie générale
Pr. NAZIH Mouna* Hématologie
Pr. ZOUAIDIA Fouad Anatomie pathologique
Mai 2012
Pr. AMRANI Abdelouahed Chirurgie Pédiatrique Pr. ABOUELALAA Khalil* Anesthésie Réanimation
Pr. BELAIZI Mohamed* Psychiatrie
Pr. BENCHEBBA Driss* Traumatologie Orthopédique Pr. DRISSI Mohamed* Anesthésie Réanimation Pr. EL ALAOUI MHAMDI Mouna Chirurgie Générale Pr. EL KHATTABI Abdessadek* Médecine Interne Pr. EL OUAZZANI Hanane* Pneumophtisiologie Pr. ER-RAJI Mounir Chirurgie Pédiatrique
Pr. JAHID Ahmed Anatomie pathologique
Pr. MEHSSANI Jamal* Psychiatrie
Pr. RAISSOUNI Maha* Cardiologie
Février 2013
Pr. AHID Samir Pharmacologie – Chimie
Pr. AIT EL CADI Mina Toxicologie
Pr. AMRANI HANCHI Laila Gastro-Entérologie
Pr. AMOUR Mourad Anesthésie Réanimation
Pr. AWAB Almahdi Anesthésie Réanimation Pr. BELAYACHI Jihane Réanimation Médicale Pr. BELKHADIR Zakaria Houssain Anesthésie Réanimation Pr. BENCHEKROUN Laila Biochimie-Chimie
Pr. BENKIRANE Souad Hématologie
Pr. BENNANA Ahmed* Informatique Pharmaceutique
Pr. BENSEFFAJ Nadia Immunologie
Pr. BENSGHIR Mustapha* Anesthésie Réanimation
Pr. BENYAHIA Mohammed* Néphrologie
Pr. BOUATIA Mustapha Chimie Analytique
Pr. BOUABID Ahmed Salim* Traumatologie Orthopédie Pr. BOUTARBOUCH Mahjouba Anatomie
Pr. CHAIB Ali* Cardiologie
Pr. DENDANE Tarek Réanimation Médicale
Pr. DINI Nouzha* Pédiatrie
Pr. ECH-CHERIF EL KETTANI Mohamed Ali Anesthésie Réanimation Pr. ECH-CHERIF EL KETTANI Najwa Radiologie
Pr. EL GUERROUJ Hasnae Médecine Nucléaire
Pr. EL HARTI Jaouad Chimie Thérapeutique
Pr. EL JOUDI Rachid* Toxicologie
Pr. EL KABABRI Maria Pédiatrie
Pr. EL KHANNOUSSI Basma Anatomie Pathologie
Pr. EL KHLOUFI Samir Anatomie
Pr. EL KORAICHI Alae Anesthésie Réanimation Pr. EN-NOUALI Hassane* Radiologie
Pr. ERRGUIG Laila Physiologie
Pr. FIKRI Meryim Radiologie
Pr. GHANIMI Zineb Pédiatrie
Pr. GHFIR Imade Médecine Nucléaire
Pr. IMANE Zineb Pédiatrie
Pr. IRAQI Hind Endocrinologie et maladies métaboliques
Pr. KABBAJ Hakima Microbiologie
Pr. KADIRI Mohamed* Psychiatrie
Pr. LATIB Rachida Radiologie
Pr. MAAMAR Mouna Fatima Zahra Médecine Interne
Pr. MEDDAH Bouchra Pharmacologie
Pr. MELHAOUI Adyl Neuro-chirurgie
Pr. MRABTI Hind Oncologie Médicale
Pr. NEJJARI Rachid Pharmacognosie
Pr. OUBEJJA Houda Chirurgie Pédiatrique Pr. OUKABLI Mohamed* Anatomie Pathologique
Pr. RAHALI Younes Pharmacie Galénique
Pr. RATBI Ilham Génétique
Pr. RAHMANI Mounia Neurologie
Pr. REDA Karim* Ophtalmologie
Pr. REGRAGUI Wafa Neurologie
Pr. RKAIN Hanan Physiologie
Pr. ROSTOM Samira Rhumatologie
Pr. ROUAS Lamiaa Anatomie Pathologique
Pr. ROUIBAA Fedoua* Gastro-Entérologie
Pr. SALIHOUN Mouna Gastro-Entérologie
Pr. SAYAH Rochde Chirurgie Cardio-Vasculaire Pr. SEDDIK Hassan* Gastro-Entérologie
Pr. ZERHOUNI Hicham Chirurgie Pédiatrique
Pr. ZINE Ali* Traumatologie Orthopédie
Avril 2013
Pr. EL KHATIB Mohamed Karim* Stomatologie et Chirurgie Maxillo-faciale
Pr. GHOUNDALE Omar* Urologie
Pr. ZYANI Mohammad* Médecine Interne
2- ENSEIGNANTS – CHERCHEURS SCIENTIFIQUES
PROFESSEURS / PRs. HABILITES
Pr. ABOUDRAR Saadia Physiologie
Pr. ALAMI OUHABI Naima Biochimie – chimie
Pr. ALAOUI KATIM Pharmacologie
Pr. ALAOUI SLIMANI Lalla Naïma Histologie-Embryologie
Pr. ANSAR M’hammed Chimie Organique et Pharmacie Chimique Pr. BOUHOUCHE Ahmed Génétique Humaine
Pr. BOUKLOUZE Abdelaziz Applications Pharmaceutiques Pr. BOURJOUANE Mohamed Microbiologie
Pr. BARKYOU Malika Histologie-Embryologie Pr. CHAHED OUAZZANI Lalla Chadia Biochimie – chimie
Pr. DAKKA Taoufiq Physiologie
Pr. DRAOUI Mustapha Chimie Analytique
Pr. EL GUESSABI Lahcen Pharmacognosie
Pr. ETTAIB Abdelkader Zootechnie
Pr. FAOUZI Moulay El Abbes Pharmacologie
Pr. HAMZAOUI Laila Biophysique
Pr. HMAMOUCHI Mohamed Chimie Organique Pr. IBRAHIMI Azeddine Biologie moléculaire Pr. KHANFRI Jamal Eddine Biologie
Pr. OULAD BOUYAHYA IDRISSI Med Chimie Organique
Pr. REDHA Ahlam Chimie
Pr. TOUATI Driss Pharmacognosie
Pr. ZAHIDI Ahmed Pharmacologie
Pr. ZELLOU Amina Chimie Organique
Mise à jour le 09/01/2015 par le Service des Ressources Humaines
A mon cher père
De tous les pères tu es le meilleure.
Merci pour avoir fait ce que je suis. Tu es pour moi l’homme idéal, l’exemple
que j’admire, pour toutes peines et les sacrifices que tu as consentis pour
mon éducation et ma formation.
Ce travail ne saurait exprimer mon amour, mon respect et ma profonde
reconnaissance.
Aucune expression, ni aucune dédicace ne pourrait exprimer ce que tu
représentes dans ma vie, mais j’espère que tu trouveras ici dans ce modeste
travaille le fruit de tant de sacrifices.
Je t’aime papa et j’implore le tout puissant pour qu’il t’accorde une bonne
santé et une vie heureuse.
A ma très chère mère
Voici le jour que tu as attendu impatiemment.
Tous les mots du monde ne sauraient exprimer l’immense amour que je porte
pour toi, ni la profonde gratitude que je te témoigne pour tous les efforts et
les sacrifices que tu n’as cessée de consentir pour mon instruction et mon
bienêtre.
Puisse Dieu tout puissant te protéger, te procurer longue vie et bonne santé
afin que je puisse vous rendre un minimum de ce que je tu dois.
J’espère que tu Seras toujours fier de moi.
A mes très chères grands-mères
Nulle dédicace ne serait exprimer l’amour l’estime et l’affection que j’ai
pour vous.
Vos prières et vos encouragement tout au long de mes études on été pour
moi un grand soutien. Que dieu vous garde pour moi et vous protège.
A mon cher frère et ma petite sœur
Je ne peux exprimer à travers ces lignes tous mes sentiments d’amour et de
tendresse envers vous.
J’espère que vous trouvez dans cette thèse l’expression de mon grand
affection pour vous.
Que dieu vous protège et consolide les liens sacrés qui nous unissent.
Je vous aime
A mes adorables et merveilleuses perles précieuses: mes copines et
mes sœurs que j’aime
A toi ma Sisi pour la gentille sœur que tu es, et que j’aime de tout mon cœur,
pour avoir toujours répondu présente pour moi, pour avoir toujours été à
mon écoute pour ton aide et tes mots rassurants et encourageants qui sont
marqués a jamais en moi, et pour les agréables moments partagés ensemble.
Tu es et tu resteras pour toujours My Dolly chérie que j’adore,
A toi Malika, Khadija, Khadija et Naima en témoignage de mon affection
fraternelle, de ma profonde tendresse et reconnaissance, je vous souhaite une
vie pleine de bonheur et de succès et que Dieu, le tout puissant, vous
protège et vous garde. Vous êtes formidable
A toi Sarah et chaimaa pour nos moments passés ensemble, Je sais que je
n’étais pas toujours facile, mais vous avez supporté mes sauts d’humer. Je
vous souhaite bonne santé, bonheur et réussite dans vos vies personnelles et
A Fatimazahra, Maroua, Jihan, Najlae en souvenir de notre sincère et
profonde amitié et des moments agréables que nous avons passés ensemble.
Veuillez trouver dans ce travail l’expression de mon respect le plus profond
et mon affection la plus sincère.
A toi mon cher Younes
Tu as été à mes cotés pendant toutes les étapes de ce travail, je t’en suis très
reconnaissant.
Aucune dédicace ne peut exprimer la profondeur des sentiments d’amour,
d’attachement que j’éprouve à toi
Pour ton amour et ton soutien inconditionnel, pour ta gentillesse et ta
serviabilité, pour ton humour et ta capacité de trouver les mots justes et
réconfortants, pour ta patience et bonheur que tu m’apportes jour après
jour.
Je te remercie.
Que dieu te protège et consolide les liens sacrés qui nous unissent, et te
réserve le meilleur avenir et le beaucoup de bonheur.
Mes chers amis Mehdi, Mehdi, Younes
Je vous dédié ce travail en vous souhaitant le bonheur familial et
professionnel.
A mes chers oncles, tantes, leurs époux et épouses
A mes chers cousins cousines
Veuillez trouver dans ce travail l’expression de mon respect le plus profond
et mon affection la plus sincère
A notre maitre et rapporteur de thèse
Monsieur Y.SEKHSOKH
Professeur de microbiologie à la faculté de médecine et de
pharmacie de rabat
Nous vous remercions vivement de nous avoir fait l’honneur
de diriger ce travail.
Vous nous avez aidé jusqu’au dernier moment avec un grand savoir et des
orientations éclairantes accompagnées d’une grande gentillesse. Sans votre
Clairvoyance, vos corrections méticuleuses, ce travail n’aurait pu être
préparé et dirigé dans des conditions favorables.
Vous nous avez toujours réservé le meilleur accueil, malgré vos obligations
professionnelles.
Nous saisissons cette occasion pour vous exprimer notre profonde gratitude
tout en vous témoignant notre respect le plus profond et nos remerciements
A notre maitre et président de thèse
Monsieur M.ZOUHDI
Professeur de microbiologie
Nous vous sommes infiniment reconnaissants du grand honneur que vous
nous faites en acceptant de présider le jury de cette thèse. Ce travail est une
occasion pour moi d’apprécier vos qualités humaines et professionnelles.
Veuillez accepter, cher maître, nos vifs remerciements
A notre maitre et juge de thèse
Madame S.TELLAL
Professeur de Biochimie à la faculté de médecine et de pharmacie de
rabat
Nous vous remercions d’avoir accepté de siéger dans notre jury de thèse.
Vous avez toujours suscité notre admiration par vos qualités humaines et
professionnelles et nous vous remercions de la solide formation en biochimie
que nous avons reçue grâce à vous de par votre enthousiasme à transmettre
votre savoir.
Veuillez trouvez dans ce travail, l’expression de notre sincère estime et
notre profond respect.
Nous vous remercions vivement pour l’honneur que vous nous faites en
acceptant de juger ce travail.
A notre maitre et juge de thèse
Madame S.ELHAMZAOUI
Professeur de microbiologie à la faculté de médecine et de
pharmacie de rabat
Mes remerciements les plus sincères pour l’honneur que vous me faites en
participant à ce jury.
Je tiens à vous dire que vous nous avez toujours impressionnés par la clarté
et l’aisance avec laquelle vous transmettez votre savoir. Votre simplicité et
votre grande modestie font de vous une femme admirée et respectée de tous.
A notre maitre et juge de thèse
Madame M.CHADLI
Professeur de microbiologie à la faculté de médecine et de
pharmacie de rabat
Nous vous remercions ainsi pour votre aide à l’élaboration de ce travail,
Nous sommes très sensibles à votre gentillesse et à votre accueil très
aimable.
Notre gratitude est grande pour l’intérêt que vous avez montré à l’encontre
de notre travail.
Liste
Liste des abréviations
ADN : Acide désoxyribonucléique.
AFLP : Amplified fragment length polymorphism. AMM : Autorisation de la mise sur marché.
ARN : Acide ribonucléique. BoNT : Neurotoxine Botulique. C.Botulinum : Clostridium Botulinum. Chaine H : Chaine lourde.
Chaine L : Chaine légère.
DL50 : Dose létale médiane. DLS : Six doses létales.
DMM : Densité maximale.
DVS : Dyssynergie vesico sphinctérienne. ELISA : Enzyme-linked immunosorbent assay. FDA : Food and drug administration.
FRET : Fluorescence resonance energy transfer. IMC : Infirmité motrice cérébrale.
INR : International Normalised Ratio. LCR : Liquide céphalo rachidien.
PARD : Random amplified polymorphiphic DNA. PCR : Polymerase chain reaction.
SCM : Sterno-cléido-mastoïdien. SEP : Sclérose en plaque.
SNAP25 : Synaptosomal associated protein. SSU : Sphincter strié urétrale.
U : Unité.
UI : Unité internationale.
Liste des Tableaux
Tableau I: caractères biochimiques du C.Botulinum.. ... 8 Tableau II : principales caractères biochimiques du C.botulinum selon le type. ... 9 Tableau III: Quelques foyers récents de botulisme humain. ... 14 Tableau IV: Applications clinique de la toxine botulique selon Jankovic. ... 47 Tableau V: Différentes spécialités de TB commercialisées en France ... 69 Tableau VI: Injections de toxine pour les torticolis, doses en unité par
Liste des Figures
Figure 1:Clostridium botulinum type A, formes végétatives (A) et formes sporulées (B). Observation au microscope à contraste de phase. ... 7 Figure 2:Dissémination de la neurotoxine botulique. ... 11 Figure 3:Identification d’une toxine Botulique à partir d’un aliment. ... 22 Figure 4: Position favorable pour les patients non ventilés atteint de botulisme. 26 Figure 5:Structure de la neurotoxine botulique A et organisation des domaines
Fonctionnels ... 36 Figure 6: Les étapes de l’entrée des toxines botuliques dans les terminaisons
nerveuses ... 38 Figure 7: Internalisation de la toxine botulique ... 40 Figure 8: Cibles protéiques des différentes toxines botuliques ... 41 Figure 9: injection orbiculaire. ... 76 Figure 10: injection prétarsale... 76 Figure 11: Test de Minor comparatif un mois après traitement par toxine
botulique : ... 79 Figure 12 : Test de Minor 1 mois après les injections de toxine botulique :
efficacité du Dysport ®... 79 Figure 13: Points de repère avant les injections intradermiques de Dysport. ... 80 Figure 14: Injection intradermique de toxine botulique au niveau de la main. .... 80 Figure 15:Les muscles responsables des rides et plis du haut du visage ... 83
Figure 16 : Les points d’injection du Procerus et du Corrugator... 86 Figure 17: Points d’injection de l’orbiculaire externe ... 86 Figure 18 : Les points habituels d’injection du Frontalis ... 87
Introduction...1 Chapitre1 : Botulisme ...4 I.Clostridium botulinum ...5 I.1.Historique ...5 I.2.Epidémiologie ...6 I.2.1.Agent pathogène...6 I.1.2.1.Caractères morphologiques ...6 I.1.2.2.Caractères culturaux ...7 I.1.2.3.Caractères antigéniques ...8 I.1.2.4.Caractères biochimiques...8 I.2.2.Réservoir du germe ...9 I.2.3.Mode de transmission et contamination ...9 I.2.4.Facteurs favorisants ... 12 I.2.5.Aspects épidémiologiques ... 12 II.Etude clinique ... 14 III.Diagnostic biologique ... 17 III.1.Mise en évidence de la neurotoxine botulique ... 17 III.1.1.Elisa... 17 III.1.2.Tests immuno-chromatographiques ou tests sur bandelette ... 18 III.1.3.Tests d’activité létale chez la souris ... 18 III.1.4.Tests d’activité protéolytique ... 20
III.1.5.Autre méthode ... 20 III.2.Mise en évidence et identification d’une toxine botulique dans un aliment... 21 III.3.Recherche de toxines botuliques dans d'autres prélèvements (liquide de lavage gastrique, vomissements, contenu gastrique, matières fécales) ... 23 III.4.Mise en évidence de Clostridium botulinum ... 23 III.5.Caractérisation génétique des souches de Clostridium botulinum ... 25 IV.Traitement du botulisme ... 25 IV.1.Sérothérapie ... 26 IV.2.Traitement médical ... 29 V.Prévention ... 30 V.1.Vaccination ... 30 V.2.Hygiène en agroalimentaire... 30 V.3.Décontamination ... 31
Chapitre 2 : Toxine Botulique ... 33
I.Historique et origine ... 34 II.Données pharmacologiques de la toxine botulique ... 36 II.1Physiologie et mécanisme d’action ... 36 II.1.1.Structure ... 36 II.1.2.Mécanisme d’action de la toxine botulique ... 37 II.1.2.1.Mécanisme moléculaire ... 37 II.1.2.2.Mécanisme cellulaire ... 42 II.2.Action clinique ... 43
II.3.Durée d’action ... 44 II.4.Toxicité ... 45 II.5. Indication ... 46 II.5.1.Indications sous AMM ... 49 II.5.1.1.Dystonie ... 49 II.5.1.2.L’hémispasme facial ... 52 II.5.1.3.Spasticité ... 53 II.5.1.4.L’hyperhidrose axillaire sévère ... 54 II.5.1.5.L’hyperactivité détrusorienne neurologique (HDN) ... 55 II.5.1.6.Les rides verticales intersourcilières ... 56 II.5.2.Indication hors AMM ... 57 II.5.2.1.Dystonies focales ... 57 II.5.2.2.Syndrome de Frey ... 59 II.5.2.3.L’ hyperhidrose palmaire ... 59 II.5.2.4.L’hypersalivation ou hypersialorrhée ... 59 II.5.2.5.dyssynergie vésico-sphinctérienne(DVS) ... 60 II.5.2.6.Anisme ... 61 II.5.2.7.Bruxisme et hypertrophie des masséters ... 61 II.5.2.8.Dysphagie ... 62 II.5.2.9.Myoclonies ... 62 II.5.2.10.Les rides de visage ... 62 II.6.Contre indications ... 63
II.7.Interactions Médicamenteuses ... 64 II.8.Effets indésirables ... 64 II.9.Précautions d’emploi ... 66 III.Aspect pharmaceutique de la toxine botulique ... 68 III.1.Présentation des spécialités et posologies : ... 68 III.2.Bioéquivalence ... 70 III.3.Reconstitution et conservation ... 71 III.4.Indication : ... 72 III.4.1.Le botox® ... 72 III.4.2.Le dysport® ... 73 III.4.3.Le neurobloc® ... 73 III.4.4.Le vistabel® ... 73 III.5.Techniques d’injections ... 74 Conclusion ... 88 Résumé
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
1
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
2
La toxine botulique est une neurotoxine (la plus puissante des neurotoxines connues) qui agit au niveau de la plaque motrice en se fixant de façon irréversible sur les récepteurs présynaptiques et bloque la libération d’acétylcholine. Elle est naturellement produite par des bactéries anaérobies et sporulées, dénommées
Clostridium botulinum. Selon leurs propriétés antigéniques, elles se divisent en sept
toxinotypes (A, B, C, D, E, F et G).Associées à des protéines non toxiques, les neurotoxines forment un complexe appelé toxine botulique. Parmi elles, seules les toxines A et B sont employées en thérapeutique.
Ces différents types déterminent chez l'Homme (types: A, B, E, exceptionnellement C et F) et chez l'animal (C, D) une maladie nommée Botulisme qui est une affection neurologique se traduisant par des paralysies flasques, symétriques et descendantes. Les symptômes de cette pathologie ainsi que le mécanisme d'action de la toxine sont à l'origine de son emploi en thérapeutique, notamment en neurologie qui a le plus grand nombre d’indications dans le cadre de l’autorisation de la mise sur le marché. La toxine botulique est la première protéine toxique, issue de cultures bactériennes, à être utilisée en thérapeutique.
Les neurotoxines botuliques sont reconnues comme les poisons biologiques les plus puissants et sont considérées comme cinq fois plus actives que la toxine tétanique. En effet, après ingestion, la dose létale pour l'homme est estimée entre 0,1 et 1 microgramme, pour la toxine A. Du fait de cette extrême toxicité, les toxines botuliques peuvent constituer des armes biologiques.
L'objectif de ce travail est d’identifier les différentes utilisations de la toxine botulique en thérapeutique. Il s'agit, plus précisément:
-Illustrer le mécanisme d’action de cette toxine.
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
3
-Définir les différentes indications et les contre-indications.
-Déterminer, pour chaque indication les principaux muscles injectés, la toxine employée, les doses injectées, la fréquence des injections.
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
4
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
5
I. Clostridium botulinum I.1. Historique
L’ingestion de toxine botulique entraine l’apparition d’un tableau de paralysie généralisée appelé le botulisme (du latin Botulus signifiant Saucisse) qui est connue depuis le XVIIIe siècle [1].
La première description clinique du botulisme remonte à 1820 par un médecin allemand : Justinius Kerner qui rapporta 76 cas d’empoissonnement par des saucisses fumées et établit le lien entre la consommation de celles-ci et la survenue d’une maladie paralysante qui garda un certain temps le nom de «maladie de Kerner» [1,2].
L’étude scientifique de la maladie ne débuta qu’en 1894, lorsqu’il survint, en Belgique, un foyer impliquant 24 personnes ayant consommé du jambon cru lors d’une fête. Trois d’entre eux décédèrent du botulisme et 20 autres furent malades. Le jambon incriminé permet à Van Ermengem de mettre en évidence une bactérie gram positif, anaérobie, sporulée et productrice de toxines, Cette bactérie fut dénommée « Bacillus botulinus » en raison de son origine, le terme latin botula désignant une saucisse [1,2].
En 1904, en Allemagne, Landman isola la bactérie responsable d’un foyer survenu après la consommation de conserves d’ haricots blancs [3].
C’est en 1910 que Leuchs mit en évidence, pour la première fois l’existence de toxines distinctes selon les souches de bacillus botulinus. En comparant les souches de Landman et de Van Ermengem, il découvrit des différences de caractères biochimiques et constata que les anti-sérums préparés contre ces toxines ne neutralisaient que la toxine homologue. Le type isolé par Landman fut appelé type A, celui découvert par Van Ermengem type B [4].
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
6
Le sérotype C fut identifié simultanément aux Etats-Unis et en Australie, en 1922 [4].
Dutoit et Robinson découvraient la toxine D, en 1927, lors d’un foyer de botulisme bovin en Afrique du Sud [3].
En 1936,1937 l’étude d’une épidémie apparue en Ukraine permit à Guerisson, Gummings et Meyer d’isoler le type E [3].
Le sérotype F fut extrait, en 1960, par Moller et Scheibel, d’un pâté de préparation familiale, à l’origine d’un foyer sur une île danoise [3].
En 1970, les recherches systématiques de Clostridium Botulinum dans le sol en Argentine permirent d'isoler la toxine G. La bactérie productrice de Cette toxine est nommée Clostridium argentinense [4].
I.2. Epidémiologie
I.2.1. Agent pathogène
L’agent pathogène impliqué dans le botulisme est une bactérie appelée
C.botulinum. C’est la toxine extrêmement puissante qu’elle synthétise qui est
responsable de la maladie.
I.1.2.1. Caractères morphologiques
C.botulinum est un bacille à gram positif (faible) de 4 à 9 µ de long, sporulé,
capsulé, à extrémités arrondies, légèrement mobile par ciliature péritriche. Il peut être isolé en diplo ou en cocco-bacilles. En quelques jours, apparait une spore ovoïde, déformante, subterminale. Dans les vieilles cultures, les formes d’involution dont nombreuses, en massues, en battants de cloche, vacuolaires, filamenteuses [5, 6-8].
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7
Figure 1:Clostridium botulinum type A, formes végétatives (A) et formes sporulées (B). Observation au microscope à contraste de phase [2].
I.1.2.2 Caractères culturaux
C.Botulinum est strictement anaérobie : il ne peut pas pousser dans une
atmosphère contenant plus de 10% d’oxygène. Le bacille botulique ne peut se développer qu’à pH voisins de la neutralité ou légèrement basiques (8,2-8.5). Sa croissance ne peut se faire à des pH inférieur à 4,5. Sa température optimale de croissance est comprise pour les souches C et D entre 30 et 40°C. Le bacille pousse également très bien jusqu’à 42°C, ce qui lui permet de se développer à la température du corps de tous les mammifères. Il est par ailleurs capable de croitre entre 3 et 6 °C, ce qui explique sa résistance dans le milieu extérieur [9].
En bouillon sous huile, C. botulinum donne un trouble abondant avec dépôt dans le fond du tube. Il dégage une odeur caractéristique de beurre rance [5,6].
En gélose profonde riche au sang, il donne des colonies assez grosses sphériques en houpettes avec un important dégagement gazeux [5,6].
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
8
I.1.2.3 Caractères antigéniques
Il y a 6 variétés antigéniquement distinctes de toxines : A, B, C, D, E et F. Des analyses génétiques, fondées sur la comparaison des séquences du gène d’acide ribonucléique (ARN 16s) et les homologies ADN/ADN, a montré que les souches de
C. botulinum forment quatre groupes distincts qui correspondent aux quatre groupes
physiologiques I à IV. Les méthodes d’analyse du polymorphisme génétique confirment également le regroupement des souches protéolytiques de type A, B et E dans le groupe physiologique I et des souches non protéolytiques de type B, E, et F dans le groupe II [2].
I.1.2.4. Caractères biochimiques
Les caractères enzymatiques et biochimiques du C.Botulinum sont bien identifiés par des galeries miniaturisées [5].
Tableau I: caractères biochimiques du C.Botulinum [5].
Oxydase - Catalase - Glucose + Nitrate - Indole - Lactose - Saccharose 0 Gélose + Gaz ++ H2S -
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9
C.botulinum possède deux propriétés biochimiques principales : un fort pouvoir
protéolytique lié à l’élaboration de nombreux enzymes protéolytiques et une activité glucidolytique importante sur de nombreux sucres [8].
Tableau II : principales caractères biochimiques du C.botulinum selon le type [6].
Type A C D E biochimie Protéolytique Glucidolytique Protéolytique faible Glucidolytique Non Protéolytique Peu Glucidolytique Protéolytique lentement Glucidolytique
I.2.2. Réservoir du germe
Le réservoir de C.Botulinum, comme des autres Clostridium est l’environnement: sol, poussière, sédiments marins ou d’eau douce, eaux souillées, lisiers, et occasionnellement le contenu digestif de l’Homme et des animaux asymptomatiques [10].
I.2.3. Mode de transmission et contamination
Le botulisme est une maladie humaine et animale mais il n’y a pas de transmission directe documentée entre un animal atteint de botulisme et l’Homme. La maladie n’est pas transmissible aussi entre individus.
Le mode de transmission le plus habituel et l’ingestion d’un aliment dans lequel la bactérie a produit sa toxine. Il s’agit donc d’une intoxication et non pas d’une infection. Les aliments en cause sont le plus souvent des semi-conserves (jambon cru, poisson fumé) ou des conserves familiales de produits végétaux ou animaux. Les conserves familiales ne sont pas généralement chauffées à une température suffisante pour inactiver les spores.
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
10
Trois formes de botulisme peuvent être distinguées selon le mode de contamination.
L’intoxication botulique est due à l’ingestion de toxine botulique préformée
dans un aliment. C’est la forme la plus fréquente chez l’adulte.
La toxi-infection botulique causée par l’ingestion de bactéries et/ou spores de
C.botulinum. Cette forme a été observée chez des jeunes enfants (0-12 Mois,
botulisme infantile), suite à l’ingestion de miel ou par inhalation de poussières contaminées par des spores de C.botulinum. Le botulisme par toxi-infection est aussi observé chez des adultes (cf. maladie humaine).
Le botulisme par blessure est causé par l’inoculation des spores de C.botulinum
dans une plaie. Des cas de botulisme iatrogènes ont été rapportés suite à l’injection de toxine botulique à des fins thérapeutiques ou cosmétologiques [10].
a. La neurotoxine botulique sous forme de complexe (TB) préformée dans des aliments est ingérée (intoxication botulique). Dans certaines conditions, les C.botulinum ingérés peuvent se multiplier dans le contenu intestinal et produire de la toxine in situ (toxi-infection intestinale).b. Dans l’intestin grêle proximal, le pH voisin de la neutralité entraîne la dissociation de la TB en neurotoxine botulique (BoNT) et protéines non toxiques. c. La BoNT peut alors franchir la barrière digestive par transcytose dans les cellules épithéliales. Elle est disséminée localement et dans l’organisme par la circulation générale. d. La colonisation d’une plaie contaminée par C. botulinum conduit à la production in situ de neurotoxine botulique qui est disséminée dans tout l’organisme par la circulation générale (botulisme par blessure)
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
11
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
12
I.2.4. Facteurs favorisants
La cause la plus fréquente du botulisme est l’ingestion d’un aliment contenant les spores ou la toxine. Tous les aliments peuvent être impliqués, et parmi les facteurs favorisants : préparations artisanales comme le boudin, absence de conservateurs, conservation dans des conditions d'anaérobiose, conserves avariées
I.2.5. Aspects épidémiologiques
C.Botulinum est présent dans l’intestin de l’homme et des animaux [5].
Du fait de la résistance de sa spore, la bactérie et largement répandue dans le sol, elle contamine souvent les légumes, les fruits et les autres aliments [11].
Le Botulisme humain est une affection neurologique rare mais grave, qui fait l’objet d’une déclaration obligatoire depuis 1986 [12].
Les données épidémiologiques disponibles sont très variables d’un pays à l’autre. Le botulisme intervient de façon régulière sous forme de cas isolés ou de petits foyers dans certains pays, alors que dans d’autres, seuls de rares foyers, plus ou moins étendus, sont rapportés épisodiquement.
En France
Entre 2010 et 2012, 24 foyers de botulisme confirmés, impliquant 51 individus, ont été identifiés : 11 foyers de types A (23 cas), 10 foyers de types B (24 cas) et 1 foyer de type E (1 cas). L’origine du botulisme, quel qu’en soit le type, était alimentaire dans 21 foyers (48 cas), les 3 autres cas étaient dus à une colonisation intestinale par le C.Botulinum. Tous les cas de botulisme A ont été des formes sévères, alors que les cas de botulisme de type B et E ont évolué sur un mode plus bénin. L’aliment responsable a été́ biologiquement confirmé dans 14 des 21 foyers alimentaires. Des préparations familiales ont été́ mises en cause dans 10 des foyers alimentaires confirmés (jambon : 6 foyers de botulisme de type b, et conserves de
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légumes : épinards et asperges dans 2 foyers de botulisme de type b, haricots verts et aubergines dans 2 foyers de type A). Des produits commercialisés ont été́ responsables des 4 autres foyers confirmés (préparations à base d’olives et de tomates séchées, préparation de pâtes fraîches dans 3 foyers de type A et un pâté́ dans un foyer de type b) [12].
Aux États-Unis
Entre 1981-2002, 1 269 cas de botulisme ont été rapportés. La forme la plus habituelle est le botulisme infantile (80-100 cas annuels). Le botulisme alimentaire est moins fréquent (14 à 43 cas annuels, moyenne 23) et se manifeste sous forme de cas isolés ou de petits foyers. Les types A, B ou E sont habituellement rencontrés avec une prédominance de chacun de ces types dans une zone spécifique. Ce sont surtout les conserves familiales de légumes (pois, haricots) insuffisamment stérilisés qui sont responsables du botulisme de type A dont la mortalité pouvant atteindre 70 à 100 personnes [2,5].
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14
Autres pays
Tableau III: Quelques foyers récents de botulisme humain [2].
II. Etude clinique
Le botulisme est une intoxication grave. Le C. Botulinum est l’exemple unique d’un germe non virulent dont le pouvoir pathogène est lié uniquement à l’ingestion de toxine synthétisée en dehors de l’organisme, dans des conserves alimentaires souillées et mal préparées [8].
Le Botulisme est une maladie à manifestations essentiellement neurologiques, son incubation moyenne est de 12 à 36 heures [8].
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
15
Habituellement, plus la période d’incubation est brève, plus la maladie est sévère. Plus l’évolution est courte, plus le pronostic est grave, sinon fatal. La longueur de la période d’incubation va souvent de pair avec des formes moins graves, une évolution moins rapide un pronostic plus bénin [13].
Les premiers signes de l’intoxication sont surtout des signes digestifs : vomissements, constipation, puis survient les manifestations paralytiques, notamment paralysie de l’accommodation, signe précoce et constant, paralysie des muscles bucco-pharyngés (dysphagie, paralyse de la déglutition). La température reste normale [8].
Dans les formes frustes, les troubles oculaires dominent. Dans les formes sévères, les paralysies s’étendent (nerfs moteurs de l’œil, pharynx, vessie) mais ne s’accompagnent d’aucun trouble de la sensibilité. Il existe une inhibition de toutes les sécrétions (atteinte du parasympathique. La mort survient en 36 à 48 heures, par paralysie respiratoire ou atteinte cardiaque. Pendant toute l’évolution, le malade reste conscient [8].
L’évolution des signes cliniques semble dépendre de la quantité de toxine ingérée ou produite dans le tube digestif : plus cette quantité est importante, plus l’évolution est rapide et grave [13].
Le diagnostic clinique est très difficile car tous les symptômes décrits précédemment ne sont pas forcément observés, et que le tableau anatomo-clinique peut être confondu avec un grand nombre d’autres maladies [13].
Un foyer d’au moins deux personnes présentant des signes de paralysie flasque symétrique et descendante est pathognomonique du botulisme. Les cas isolés sont plus difficiles à identifier, d’autant plus que le botulisme est une maladie rare et que de nombreux médecins ne sont pas familiers avec cette affection [2].
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
16
Le diagnostic différentiel inclut les neuropathies auto-immunes telles que les syndromes de Guillain-Barré et Miller Fischer, ainsi que les myasthénies auto-immunes, myasthénie gravis et syndrome de Lambert-Eaton, et plus occasionnellement les intoxications par des coquillages ou poisson, dues notamment à la tétrodotoxine ou saxitoxine [2, 14].
Le syndrome de Guillain-Barré est une affection rare à la suite d’une infection aiguë (Campylobacter jejuni dans 30 % des cas) qui se manifeste par une paralysie ascendante. Elle intervient sous forme de cas isolés et jamais en foyer. Le syndrome de Miller-Fisher, très voisin de celui de Guillain-Barré, se caractérise par une ophtalmoplégie, une ataxie, et une aréflexie. Dans toutes les formes de Guillain-Barré et contrairement au botulisme, la teneur en protéines du liquide céphalorachidien est élevée, mais cette élévation peut survenir seulement plusieurs jours après l’apparition des symptômes. La myasthénie gravis se traduit par une faiblesse musculaire due à des autoanticorps antirécepteur de l’acétylcholine, et le syndrome de Lambert Eaton par une parésie des membres supérieurs chez des sujets atteints de cancer [2].
Le diagnostic repose habituellement sur le recueil des antécédents et l’examen clinique suivi de la confirmation en laboratoire qui comprend la mise en évidence de la toxine botulique dans le sérum, les selles ou les aliments, ou la mise en culture de C.
Botulinum à partir des selles, des tissus d’une plaie ou des aliments. Des erreurs de
diagnostic sont parfois commises à propos du botulisme qui est souvent confondu avec un syndrome de Guillain-Barré ou une myasthénie grave.
Intérêt thérapeutique de la toxine botulique
17
III. Diagnostic biologique
Le diagnostic biologique du botulisme repose sur la mise en évidence de la toxine botulique dans le sérum des patients, éventuellement dans un échantillon de selles s’il s’agit d’une toxi-infection intestinale botulique, ainsi que dans l’aliment contaminé à l’origine d’une forme alimentaire de botulisme. Les Clostridium producteurs de toxine botulique sont recherchés dans les selles, l’aliment contaminant, et dans des plaies infectées à l’origine de botulisme par blessure. La plupart des patients (environ 70 %) présentent une toxémie, qui apparaît précocement, dès le 2éme jour, et persiste plusieurs jours, voire plusieurs semaines. Cependant, le niveau de toxine botulique dans le sérum est généralement bas (moins d’une à six doses létales souris [DLS par ml]), ce qui implique un test très sensible de détection de toxine botulique [2].
III.1. Mise en évidence de la neurotoxine botulique III.1.1. Elisa
Parmi les méthodes immunologiques de détection des toxines botuliques, les tests enzyme linkedimmuno absorbent assay (Elisa) à l’aide d’anticorps polyclonaux+ et/ou monoclonaux +ont été les plus étudiés. Cependant, la sensibilité des tests Elisa est 10 à 100 fois inférieure à celle du test d’activité létale chez la souris.
Des systèmes d’amplification du signal ont permis d’améliorer la sensibilité des tests Elisa. D’autres systèmes immunologiques ont été développés comme les biosenseurs avec détection par fibre optique ou la technique d’immuno-électro-chemilumiscence, mais l’application de ces tests à la détection des toxines botuliques dans les échantillons biologiques (sérum, selles) ou d’aliments a été jusqu’à maintenant très limitée du fait d’un manque de sensibilité ou d’interférence non spécifique [2].
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III.1.2. Tests immuno-chromatographiques ou tests sur bandelette
Ces tests ont l’avantage d’être très rapides et n’exigent aucun équipement particulier, mais ils sont nettement moins sensibles que les tests Elisa ou les tests d’activité létale chez la souris et parfois fournissent de fausses réactions positives [2].
La détection rapide d'antigènes bactériens par immunochromatographie sur membrane consiste à déposer l'échantillon à tester (sang, urines, selles, LCR, pus,... ) à l'une des extrémités d'une membrane de nitrocellulose fixée sur un support plastique ou carton. Si l'antigène recherché est présent, il se lie avec un anticorps marqué le plus souvent à l'or colloïdal. Sous l'effet d'un tampon lyse-migration, les complexes antigènes-anticorps migrent par capillarité et sont arrêtés par des anticorps de capture fixés sur la membrane. Un résultat positif se traduit par l'apparition d'une ligne colorée. L'excès de complexe conjugué continue à migrer et est immobilisé par un anticorps (anti-lapin ou anti-souris), l'accumulation des complexes colorés entraîne l'apparition d'une ligne colorée, cette seconde ligne ou ligne de contrôle valide le bon fonctionnement de la réaction. En cas de réaction négative, seule la ligne contrôle est colorée. L'apparition des bandes est rapide: en 15 à 20 mn [15].
Le principe de la détection rapide d'anticorps par immuno-chromatographie sur bandelette est identique. Mais, alors que les tests détectant des antigènes ne nécessitant aucun traitement préalable de l'échantillon, les tests recherchant des anticorps imposent une centrifugation préalable des tubes de sang. Mieux vaut travailler sur du sérum que sur du sang total [15].
III.1.3. Tests d’activité létale chez la souris
Le test standard de détection de toxine botulique est le test d’activité létale chez la souris. Il consiste en l’injection par voie intrapéritonéale d’échantillon (1 ml de sérum de patient ou 0,5 ml de surnageant de culture ou d’extrait d’aliment en tampon phosphate) à des souris de laboratoire [2].
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Les échantillons de sérum doivent être obtenus avant le traitement par l'antitoxine, car ce dernier annule le test [14].
Une liste des médicaments du patient doivent accompagner les échantillons de diagnostic. Parce que, des médicaments tels que le bromure de pyridostigmine et d’autres qui sont toxique pour la souris peuvent être dialysées à partir d’échantillons avant le test [14].
La présence de toxine botulique se traduit par l’apparition de signes cliniques caractéristiques de botulisme avec poil hérissé, faiblesse musculaire, détresse respiratoire se manifestant par un resserrement de la ceinture abdominale et une discordance respiratoire, puis la mort de l’animal. Le délai d’apparition de ces symptômes varie selon la dose de toxine injectée. Avec les sérums de patients botuliques, il varie généralement de quelques heures à 18-24 heures. Ce test est très sensible, la dose létale 50 % avec la toxine botulique A est d’environ 5 pg et les signes cliniques de botulisme se manifeste à des doses inférieures, d’où une limite de détection de l’ordre du pg par ml. L’identification du type de toxine botulique est réalisée par séro-neutralisation. Pour cela, l’échantillon à tester est réparti sous un volume constant dans différents tubes dans lesquels est rajouté un des sérums neutralisants spécifiques de chaque type de toxine botulique. Après une incubation de 30 minutes, les mélanges sont injectés à des souris. Seules les souris ayant reçu le mélange avec le sérum correspondant au type de toxine botulique présent dans l’échantillon survivent. Un autre test sur souris a été développé qui consiste à injecter des dilutions de toxine botulique dans les muscles de la patte et à mesurer le degré de paralysie musculaire induit. Ce test est utilisé pour titrer les préparations thérapeutiques de toxine botulique. D’autres méthodes de détection des toxines botuliques ont été proposées ou sont en cours de développement [2].
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III.1.4. Tests d’activité protéolytique
Une autre approche de détection des toxines botuliques est d’utiliser l’activité protéolytique de ces toxines vis-à-vis de leur substrat spécifique (VAM/ synaptobrévine, SNAP-25, syntaxine) obtenus en tant que protéines recombinantes ou peptides synthétiques. Diverses méthodes de détection des produits de clivage ont été développées comme utilisation d’anticorps spécifiques des substrats clivés ou transfert d’énergie de résonance en fluorescence (FRET). Dans cette dernière technique, deux protéines fluorescentes sont greffées de part et d’autre du site de clivage, entraînant une inhibition de fluorescence du fait de leur proximité spatiale. Après clivage par la toxine botulique, les deux marqueurs fluorescents se séparent, permettant la détection du signal de fluorescence. Une autre alternative consiste à détecter les produits de clivage par spectrométrie de masse qui procure une grande sensibilité autour d’une dose létale souris ou moins. Un système très sensible a été développé pour la détection des toxines botuliques B et F (environ 200 fois plus sensible que le test d’activité létale chez la souris) fondé sur l’utilisation de vésicules synaptiques contenant les complexes SNARE natifs et sur une détection spectroscopique par résonance plasmatique de surface. Ces types de méthodologie, qui exigent un équipement complexe, restent à développer pour l’ensemble des types de toxines botuliques et les échantillons biologiques ou alimentaires [2].
III.1.5. Autre méthode
Une approche protéomique consistant en une digestion trypsique de toxine botulique dans un échantillon et en une analyse des produits de digestion par spectrométrie de masse permet d’identifier les sous-types de toxine botulique tels A1 et A2, mais cette méthode requiert une concentration suffisante de toxine dans l’échantillon [2].