L’utilisation du test d’agglutination au latex pour la confirmation de
la présence des
Campylobacter
entéropatogènes à partir
d’échantillons d’origine aviaire et d’origine humaine
Sara MESSAD, Taha Mossadak HAMDI
21
: Faculté des Sciences de la Nature et de la Vie et des Sciences de la terre,
Université de Bouira (Algérie)
2
: Ecole Nationale Supérieure Vétérinaire d’Alger (Algérie)
Introduction
Matériel et Méthodes
Résultats et Discussion
Objectifs
Recherche des espèces de Campylobacter ayant un intérêt en hygiène alimentaire (Campylobacter entéropathogènes).
Estimer la prévalence de ce germe dans quelques élevages avicoles et chez l’homme. étude de l’efficacité d’un test d’agglutination au latex pour la confirmation de leur présence
Évaluation de la sensibilité aux antibiotiques des souches isolées.
Campylobacter thermotolérants Pathogènes résistants majeurs Volaille (poulets) Agents zoonotiques majeurs Campylobactériose (affection intestinale) Complications: Syndrome de Guillian Barré
Syndrome de Reiter
Figure 01: Prévalence des Campylobacter entéropathogènes dans les différents types d’échantillons Fientes de poulet Selles humaines
66,25%
36,74% 6,22%
93,77%
Positif Négatif
Une forte prévalence des Campylobacter thermotolérants a été observée pour les trois types d’échantillons (fig 1); Plusieurs éléments de l’environnement des fermes avicoles semblent être étroitement associés à la contamination des poulets vivants parCampylobacter. Ainsi, les sources telles que la litière souillée, l’eau de boisson non traitée, d’autres animaux de la ferme, les oiseaux sauvages, les insectes, de même que les flux humains et les formes viables non cultivables (VNC) (Humphrey et al., 2007). L’utilisation des acides organiques dans les élevages de poulet de chair permet de diminuer considérablement la propagation des campylobacter dans les élevages.
La prévalence desCampylobater à partir des selles humaines était aussi relativement élevée par rapport à la bibliographie, les souchées ont été isolées chez des enfants de moins de 2 ans car dans les pays en voies de développement la prévalence est surtout élevée chez les enfants contrairement aux pays développés ouu l’infection touche surtout les adultes, nous avons noté aussi que ces patients ayant présenté au moins des douleurs abdominales ont présenté une coproculture négative par rapport aux germes recherches habituellement.
Prévalence des
Prévalence des CampylobacterCampylobacter entéropathogènesentéropathogènes
Etude de la sensibilité aux antibiotiques des
Etude de la sensibilité aux antibiotiques des CampylobacterCampylobacter isolésisolés
NA,AM,AMC,TE,E NA,CIP,AM,AMC,TE,E 9 14 75,3% 75,3% 83,7%83,7% 100,0% 100,0% 83,7% 83,7%
Conclusion
Matériel et Méthodes
Echantillonnage Echantillonnage- Les échantillons de poulet de chair ont été récoltés aléatoirement à partir des élevages de poulet de chair.
-Les selles humaines ont été récoltées à partir d’individus présentant une symptomatologie évocatrice, en plus de la coprologie standard.
240 échantillons 80 D’origine aviaire 4 Elevages de poulet de chair de la région centre 160 D’origine humaine 2 Hôpitaux 3 Laboratoires d’analyses 1 g fiente 1g selles humaines Identification préliminaire Aspect des cultures/Gram Réactions: Oxydase/Catalase Purification (Columbia au sang) 9 ml Eau physiologique stérile 1eboite de Gélose Butzler Contrôle qualité C. fetus ATCC 443 Contrôle qualité C. jejuni ATCC 396 + C. coli ATCC 0321 + C. fetus ATCC 443 Confirmation Dry Spot Campylobacter test
Subculture (18-24 h d’incubation) Suspension bactérienne (0,5 McF) Dilution 1/10 Disques d’antibiotiques (13 antibiotiques différents) 2 boites gélose Mueller Hinton/sang Lecture / Interprétation Contrôle qualité Escherichia. coli ATCC 25922
+ Staphylococcus aureus ATCC 25923 NA,CIP NA,AM NA,TE NA,CIP,AM NA,CIP,E NA,CIP,TE NA,AM,AMC NA,AM,TE NA,TE,E NA,CIP,AM,AMC NA,CIP,AM,TE NA,CIP,AMC,TE NA,CIP,TE,E NA,AM,AMC,TE NA,AM,TE,E NA,CIP,AM,AMC,TE NA,CIP,AM,TE,E 7 2 6 18 6 32 4 2 10 9 41 1 4 8 2 74 14 14% 25% 22% 34% 5%
2 ATB 3 ATB 4 ATB 5 ATB 6 ATB
AM
AM AMCAMC GMGM EE CC TETE NANA CIPCIP 46,8% 46,8% 0,0% 0,0% 21,7% 21,7% 0,0% 0,0%
Figure 2: Etude de l’antibiorésistance des souches isolées
Figure 4 : Profil d’antibiorésistance des souches isolées Figure 3 : taux de multirésistance des souches isolées
Conclusion
Les résistances enregistrées au cours de cette étude, reflètent une situation alarmante vis-à-vis du phénomène d’antibiorésistance, témoignant le plus souvent, d’une utilisation anarchique et incontrôlée des antibiotiques en élevage avicole à des doses sub-thérapeutiques généralement.
LesCampylobacter présentent un risque important de santé publique en engendrant deux types de dangers : des dangers directs de toxi-infections alimentaires survenant après consommation de poulet contaminé et dangers indirects d’antibiorésistance croisée entre les souches « animales » et les souches « humaines » (transfert de germes zoonotiques résistants directement à l'homme ou via l'alimentation).
Comme la source majeure de la campylobactériose humaine est représentée par la volaille, la prévention devrait viser la réduction de l’infection à toutes les étapes de la chaine de production de volaille et surtout l’utilisation réfléchie, contrôlée des antibiotiques en élevages.
L’étude du profil de résistance des souches de Campylobacter thermotolérants isolées à révélé que 100% des souches étaient multirésistantes aux antibiotiques, présentant ainsi des résistances associées à 2, 3, 4, 5 et 6 antibiotiques différents (fig 3).
19 prophil de résistance ont été établis dont le plus commun était « AM,AMC,TE,NA,CIP » associant une résistance à deux bétalactamines, deux quinolones plus la tétracycline (fig 4), 15% parmi ces souches présentaient une résistance associée à la ciprofloxacine et à l’érythromycine. Ces souches présentent ainsi des profils critiques, du fait que ces deux antibiotiques constituent le traitement de choix des infections à Campylobacter chez l’homme (Luangtongkum et al., 2009), ce qui constitue une source d’inquiétude car elles pourraient compromettre l’efficacité du traitement des maladies chez les humains.
Chez la volaille, cette résistance serait liée à l’usage abusif des antibiotiques dans les élevages avicoles; la sélection de bactéries résistantes peut se produire pendant ou après un traitement antimicrobien (McDowell, 2004), Cependant, l’environnement pour sa part, peut aussi jouer un rôle dans le phénomène d’antibiorésistance